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Examen d'une moelle d'aspect normal
Myélogramme réalisé dans le cadre du bilan d’extension d’un lymphome
- But de ce diaporama: observer des cellules de la moelle osseuse.
Dossier bioclinique
- Jeune femme de 22 ans, hospitalisée pour bilan d’une AEG évoluant depuis environ 6 mois, avec arthralgies scapulaires et cervicales.
- Présence d’une adénopathie sus-claviculaire.
- Une radiographie pulmonaire montre un élargissement du médiastin ; la TDM thoraco abdomino pelvienne montre qu’il s’agit d’une masse polyganglionnaire, et objective en plus un épanchement péricardique.
- Biopsie de l’adénopathie : lymphome Hodgkinien scléro-nodulaire.

Hémogramme
- hyperleucocytose, polynucléose neutrophile, lymphopénie et discrète hypermonocytose
- hyperplaquettose
- Anémie modérée, microcytaire normochrome, compatible avec celle d’un état inflammatoire
- Pas d’anomalies morphologiques des leucocytes à l’examen microscopique
Bilan inflammatoire : CRP = 49 mg/L, fibrinogène = 8.1 g/L
Frottis médullaire et myélogramme

Observation au faible grossissement
- On apprécie la richesse en mégacaryocytes
- On recherche la présence d’éventuelles cellules de grande taille et en nombre faible = cellules rares de la moelle normale (ostéoblastes, ostéoclastes, …) ou cellules anormales.
- On privilégie l’observation dans la frange du frottis, près des grains de moelle, régions riches en cellules.
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au faible grossissement
- Au faible grossissement les régions riches en cellules sont situées derrière les grains de moelle
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au faible grossissement
- Au faible grossissement les régions riches en cellules sont situées derrière les grains de moelle
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au faible grossissement
- Au faible grossissement on apprécie la densité en mégacaryocytes (4 dans ce champ), mais on recherche aussi les cellules anormales de grande taille (ici la présence d’éventuelles cellules de Sternberg) ; au moindre doute on observe au fort grossissement
Frottis médullaire et myélogramme

Détail de l’image précédente
- Un mégacaryocyte et deux histiocytes : l’un d’eux est repris dans l’image suivante
Frottis médullaire et myélogramme

Détail de l’image précédente
- Histiocyte avec cytoplasme étendu et riche en petits débris bleus (lipofuschines).
- Le noyau arrondi présente une chromatine finement dessinée (ponctuée)
Frottis médullaire et myélogramme

Détail de l’image précédente
- Histiocyte avec cytoplasme étendu et riche en petits débris bleus (lipofuschines).
- Le noyau arrondi présente une chromatine finement dessinée (ponctuée)
Frottis médullaire et myélogramme
Au grossissement intermédiaire
- on repère des régions avec cellules bien étalées : ce sont ces régions que l’on observera au fort grossissement.
L’examen au fort grossissement se réalise en 2 temps :
- D’abord : examen des cellules de divers champs microscopiques successifs, pour identifier les cellules de chaque champ (toutes !). On note les éventuelles différences avec la définition morphologique « théorique ». On remarque les cellules anormales et/ou présentes en excès (durée de l’observation : environ 10-15 minutes)
- Dans un second temps : on réalise le décompte, on se focalisant sur des champs microscopiques avec cellules bien étalées et représentatives de l’étalement (ces champs microscopiques ne sont pas obligatoirement contigus). On regarde 2 étalements et on compte 100 cellules par lame (en théorie il faudrait regarder 500 cellules, que l’on applique en pratique aux situations « limites » : blastose > ou < 5 %, Plasmocytose > ou < N par exemple)
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au grossissement intermédiaire
- Les régions dans lesquelles les cellules sont bien étalées seront observées ensuite au fort grossissement
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [5 poly neutro, 1 monocyte, 1 métamyélocyte, 1 promyélocyte, 1 érythroblaste, 1 lymphocyte, 1 mono ou métamyélocyte]
Frottis médullaire et myélogramme

Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [3 PNN, 1 plasmocyte, 1 monocyte?, 1 myélocyte, 1 lymphocyte, 4 érythroblastes]
Frottis médullaire et myélogramme

- Noter une télophase dans un érythroblaste (X), et deux érythroblastes encore reliés par un fil (= reste du fuseau mitotique) (XX)
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [3 PNN, 1 éosinophile, 1 monocyte, 1 lymphocyte, 1 blaste, 1 blaste ou myéloblaste, 1 métamyélocyte, 1 proérythroblaste, 1 érythroblaste basophile, 1 érythroblaste polychromatophile]
Frottis médullaire et myélogramme

Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [4 PNN, 2 myélocytes, 1 métamyélocyte, 1 métamyélocyte?, 1 myéloblaste, 1 myéloblaste?, 1 lymphocyte, 2 érythroblastes acidophiles]
Frottis médullaire et myélogramme

Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [1 PNN, 1 promyélocyte, 1 éosinophile, 1 monocyte, 1 lymphocyte]
Frottis médullaire et myélogramme

Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [1 PNN, 1 myéloblaste, 1 promyélocyte, 1 lymphocyte, 1 érythroblaste acidophile, 2 érythroblastes polychromatophiles]
Frottis médullaire et myélogramme

- La chromatine des érythroblastes polychromatophiles est encore bien nettement dessinée
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [2 PNN, 1 myéloblaste, 1 myéloblaste ou promyélocyte, 1 plasmocyte, 1 myélocyte]
Frottis médullaire et myélogramme

- Le myéloblaste n’a pas de granulations : on pourrait également l’appeler blaste ou « hémoblaste ».
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [1 PNN, 1 myélocyte, 1 lymphocyte, 1 proérythroblaste, 1 érythroblaste basophile, 4 érythroblastes acidophiles]
Frottis médullaire et myélogramme

- Les érythroblastes sont aisément identifiables, mais leur stade précis l’est moins (entre polychromatophile et acidophile) : leur cytoplasme est lacunaire ou « feuilleté », reflet d’un contenu inhomogène lié à un défaut d’hémoglobinisation (ici = dysérythropoïèse inflammatoire)
Frottis médullaire et myélogramme

Examen au fort grossissement
- Identifiez chaque cellule de ce champ
- [1 Blaste, 1 myéloblaste, 2 promyélocytes, 1 promyélocyte ou myélocyte, 1 éosinophile, 2 lymphocytes]
Frottis médullaire et myélogramme

Commentaires
- La présence de cellules de Sternberg – Reed est exceptionnelle dans la MO au cours de la maladie de Hodgkin (< 3% des cas, uniquement les stades IV, et essentiellement lors de l’examen de la BOM)
- Habituellement le myélogramme montre ce que l’on observe ici : ceci correspond à une moelle d’état inflammatoire : présence d’histiocytes +/- riches en lipofuschines, érythroblastes au cytoplasme feuilleté (manque de fer pour l’érythropoïèse), parfois petit excès de monocytes et/ou d’éosinophiles (en parallèle des anomalies sanguines)
Au fait, quelles anomalies de l’hémogramme peut-on observer au diagnostic d’une maladie de Hodgkin?
Anomalies de l’hémogramme au diagnostic d’une maladie de Hodgkin :
- Parfois : pancytopénie ou leucopénie isolée ;
- Souvent, au moins 1 des anomalies suivantes :
- Lymphopénie
- Eosinophilie (parfois jusque 10 G/L)
- Et une ou plusieurs des anomalies inflammatoires :
- Anémie normochrome normocytaire arégénérative ou légèrement microcytaire hypochrome
- Polynucléose neutrophile (jusqu’à 20 G/L)
- Monocytose (jusqu’à 2 G/L
- Thrombocytose (jusqu’à 600 G/L)